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　　蛋白質(zhì)印跡法是分子生物學(xué)、生物化學(xué)和免疫遺傳學(xué)中常用的一種實驗方法。

　　蛋白質(zhì)印跡法(免疫印跡試驗)即Western Blot，其基本原理是通過特異性抗體對凝膠電泳處理過的細(xì)胞或生物組織樣品進(jìn)行著色。通過分析著色的位置和著色深度獲得特定蛋白質(zhì)在所分析的細(xì)胞或組織中表達(dá)情況的信息。

　　實驗的要點

　　1、樣品質(zhì)量。所抽取樣品的蛋白含量，蛋白變性是否充分等等，還有，蛋白樣品的PH值是否在7~8之間。這會直接影響到樣品濃縮的效果。此外，蛋白樣品是否降解、目的蛋白是否已抽取充分都會對終結(jié)果的可靠性有影響。

　　2、凝膠質(zhì)量。不連續(xù)SDS-PAGE膠對凝膠的要求較高，分離膠的PH值應(yīng)在8.8左右，而濃縮膠的PH應(yīng)在6.8左右，不要差過0.5個PH單位，因為這個PH條件是保證電泳液中的甘氨酸不電離的必要條件，也是保證能充分壓縮樣品的前提。因此，制備凝膠的時候所用Tris-HCl緩沖液的PH值是否穩(wěn)定是很重要的。

　　3、點樣。樣品盡量不要與電泳液混合，這樣能提高濃縮的效果，因為電泳液PH值為8.3，而樣品為7.5，混合后會影響到樣品的PH值，進(jìn)而影響濃縮效果。

　　4、電泳緩沖液。盡量用新鮮配制的。這樣能保證PH值和離子強(qiáng)度的穩(wěn)定。

　　5、電壓條件。我們經(jīng)常用的濃縮時80V，分離時100V比較好，條帶很平。

　　6、轉(zhuǎn)膜。膜的選擇主要從實驗?zāi)康暮蛯嶒炓髞砜紤]。例如，要做分子量小于20kD的小蛋白，0.45μm的NC膜是不可取的，因為這樣可能會使得蛋白因透過膜孔而造成膜結(jié)合的目的蛋白量不確定，從而影響到終結(jié)果的可靠性。而如果所分離的蛋白需要進(jìn)行測序，則非PVDF膜不可，因為只有PVDF膜才能經(jīng)受住嚴(yán)酷的清洗條件。

　　7、抗體雜交與底物顯色。一抗盡量選擇小鼠或者兔來源的單克隆抗體，還有要注意所用的抗體是否能夠識別變性條件下的目標(biāo)蛋白;二抗一般都是效價很高的，只要室溫下雜交1小時就可以了，適當(dāng)延長也是可以的。另外，要選擇靈敏度較高的化學(xué)反應(yīng)底物。如超敏型ECL發(fā)光液Enlight-Plus，檢測級別可達(dá)pg級，發(fā)光時間長，穩(wěn)定。